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基于CRISPR/Cas9的蛹虫草无抗性标记转化技术的构建
文献摘要：
传统的真菌遗传改造方法需要抗性标记,但目前可使用的抗性标记基因非常有限,导致蛹虫草遗传改造面临着抗性基因数量不足的问题,且尚未能实现多个目的基因的连续敲入或敲除,因此在蛹虫草中建立高效的无抗性标记转化技术显得尤为重要.本研究利用CRISPR/Cas9技术对蛹虫草的Cmura5基因进行编辑,通过内源5S-1、5S-2和U6启动子对gRNA进行转录,结果表明使用U6启动子对Cmura5基因的编辑效率达到了 100％.在尿嘧啶缺陷型菌株Cmura5-中,回补野生型Cmura5基因可实现正向选择,即野生型菌株可以在基础培养基上生长.利用设计的同源臂对Cmura5基因进行回收,可以实现反向选择,即野生型在含有5-氟乳清酸培养基中生长受到抑制.以尿嘧啶缺陷型Cmura5-为出发菌株,利用无抗性标记转化技术,导入一个重组质粒效率为75％;连续导入2个重组质粒效率为80％;连续导入3个重组质粒效率为100％;连续导入4个重组质粒效率为50％,平均转化效率为75.7％,每一轮的标记回收率均在100％,实现了 4个外源基因在蛹虫草中同时表达.
文献关键词：
CRISPR/Cas9;蛹虫草;无抗性标记;ura5;营养缺陷型标记
中图分类号：
作者姓名：
李波;邹根;周思池;尹昕;杨占山;鲍大鹏;李晓玲;汪滢
作者机构：
长春工业大学化学与生命科学学院,吉林长春130012;上海市农业科学院食用菌研究所食用菌工程技术研究中心农业部南方食用菌资源利用重点实验室,上海201403;梧州学院食品与制药工程学院,广西梧州543002
文献出处：
引用格式：
[1]李波;邹根;周思池;尹昕;杨占山;鲍大鹏;李晓玲;汪滢-.基于CRISPR/Cas9的蛹虫草无抗性标记转化技术的构建)[J].菌物学报,2022(07):1044-1054
A类：
无抗性标记,Cmura5,ura5,营养缺陷型标记
B类：
CRISPR,Cas9,蛹虫草,遗传改造,改造方法,标记基因,抗性基因,目的基因,敲除,研究利用,5S,U6,启动子,gRNA,编辑效率,尿嘧啶,野生型,正向选择,基础培养,上生,乳清,重组质粒,转化效率,外源基因
AB值：
0.205729
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